原理 多重免疫组化(mIHC)是一项先进技术,能在单张组织切片上同时检测多个靶标。该技术主要依托酪胺信号放大技术(Tyramide signal amplification, TSA)。简单来讲,TSA技术属于一类借助辣根过氧化酶(HRP)对靶蛋白或核酸进行高密度原位标记的酶学检测手段。
TSA荧光染料由酪胺分子(tyramine,T)与荧光染料偶联构成。在过氧化氢(H₂O₂)环境里,非活性的酪胺分子(T)被与二抗偶联的HRP催化激活,大量发生酶促反应,转变为具有短暂活性的中间态分子(T*),并形成共价键结合位点,与邻近蛋白(涵盖靶抗原蛋白、一抗、二抗及HRP)的富电子区域(如色氨酸、组氨酸和酪氨酸残基)通过共价键偶联而沉积。
如此一来,偶联在酪胺分子上的荧光染料也在共价偶联蛋白周围大量沉积,信号由此得到有效放大。由于抗原—酪胺蛋白间共价键的键能稳定性远超抗原—抗体间的非共价键结合力,之后借助微波修复,洗去结合在抗原上的一抗—HRP二抗—TSA染料复合物,仅保留与抗原偶联的TSA荧光染料信号。接着更换针对不同靶蛋白的抗体、不同激发波长和发射波长的TSA染料,进行第二轮孵育,依此循环,经多轮复染便可实现组织的原位多靶点染色(最多可达八标九色)。
TSA荧光染料由酪胺分子(tyramine,T)与荧光染料偶联构成。在过氧化氢(H₂O₂)环境里,非活性的酪胺分子(T)被与二抗偶联的HRP催化激活,大量发生酶促反应,转变为具有短暂活性的中间态分子(T*),并形成共价键结合位点,与邻近蛋白(涵盖靶抗原蛋白、一抗、二抗及HRP)的富电子区域(如色氨酸、组氨酸和酪氨酸残基)通过共价键偶联而沉积。
如此一来,偶联在酪胺分子上的荧光染料也在共价偶联蛋白周围大量沉积,信号由此得到有效放大。由于抗原—酪胺蛋白间共价键的键能稳定性远超抗原—抗体间的非共价键结合力,之后借助微波修复,洗去结合在抗原上的一抗—HRP二抗—TSA染料复合物,仅保留与抗原偶联的TSA荧光染料信号。接着更换针对不同靶蛋白的抗体、不同激发波长和发射波长的TSA染料,进行第二轮孵育,依此循环,经多轮复染便可实现组织的原位多靶点染色(最多可达八标九色)。